Ich habe SCFA-Daten von 4 Fasertypen in 3 Einschlussgraden (25, 50, 75%), die mit Protein gemischt und 24 und 48 Stunden lang fermentiert wurden (dreifach für jeden Zeitpunkt). Zusätzlich gab es eine Kontrolle, die nur Protein enthielt (ebenfalls in dreifacher Ausfertigung für jeden Zeitpunkt pt), und eine Kontrolle, die nur Fasern für jeden der Fasertypen enthielt (ebenfalls dreifach).
Hier ist ein kleines Beispiel, ich habe Zeit und Fiber Inclusion als nominales BTW eingestellt.
Wenn ich versuche, eine vollständige Fakultät nach Zeit, Fasertyp und Einschlussgrad durchzuführen, werden DFs verworfen, da die gesamte Proteinprobe natürlich keine Daten für einen bestimmten Faserstand enthalten kann.
Erstens habe ich unter der Annahme gearbeitet, dass ich den Namen der All-Protein-Kontrolle nicht einfach ändern und für jeden Fasertyp die gleichen Daten einfügen kann.
Zum Beispiel:
Die 24-Stunden "(Kontrolle) All Protein" 0% Faserprobe mit 33,95 mM SCFAs würde:
- 24 Stunden "FOS" 0% Faser = 33,95 mM SCFA
- 24 Stunden "Pektin" 0% Faser = 33,95 mM SCFA
- 24 Stunden "WB + PS" 0% Faser = 33,95 mM SCFA
- 24 Stunden "Gleichmäßige Mischung" 0% Faser = 33,95 mM SCFA
Ich habe es nicht getan, da ich davon ausgehe, dass die duplizierten Daten die Analyse mit mehr Beobachtungen als tatsächlich gewichten würden (alles in allem: n = 24 anstelle der tatsächlichen n = 6).
Ich weiß, dass ich die Spalten "Fasertyp" und "Fasereinschluss" kombinieren kann, aber dann kann ich keine Wechselwirkungen erkennen. Gibt es einen Ausweg? Ich habe das viel zu lange angestarrt und kann den Wald vor lauter Bäumen nicht mehr sehen! Bitte helfen Sie! Außerdem weiß ich (noch) nichts über Scripting.
